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前沿|基于微流控的细胞操纵方法与应用_细胞_芯片

南宫静远 2024-11-09 12:25:15 0

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细胞是构成生命体的基本单元,研究细胞的构造和功能对付生命规律的探索、疾病的诊断与治疗以及药物的筛选研发都具有极其主要的意义。
临床与科学研究运用中所涉及的细胞剖析常日须要对细胞样本进行多样化的操纵,传统手段在操纵微米尺度细胞样本方面存在着效率低、精度差以及本钱高档缺陷。

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微流控(microfluidics)是一种处理或操纵微量流体的技能,其涉及化学、流体力学、微电子、材料学、生物学等交叉学科。
微流控芯片作为微流控系统的核心,也常被称为芯片实验室(lab-on-a-chip,LOC)和微全剖析系统(micro total analytical system,μ-TAS)。
利用微流控芯片进行生物样本处理与剖析近些年已经成为微流控领域的研究热点,多样化细胞样本处理与剖析任务每每须要对细胞样本进行多样化操作,如富集、分选和捕获等。
在微流控芯片上,不仅能进行群体细胞的高效操纵,而且能进行单细胞层面的精准操纵。

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(图片来自网络侵删)

当前,基于微流控的细胞操纵方法紧张分为主动式与被动式两大类。
主动式指利用主动掌握所产生的外力实现流体和细胞的操纵,常见的有阀控、电控、磁控、光控和声控,具有可控性好、准确度高档优点。
被动式方法利用构造与流体、细胞与流体以及细胞与构造间的交互耦合浸染,即流体动力学的事理实现对流道内的流体与细胞运动的精确掌握,其具有系统大略、样本处理通量高档优点。
本文总结近年来基于微流控芯片的细胞操纵方法与运用研究现状,先容当前各种细胞操纵方法的基本事理,剖析各种方法的优缺陷,并展望微流控在细胞操纵领域的未来发展方向。

基于流体动力学的细胞操纵

由于流体在微流利道中黏性力远大于惯性力,芯片内的流体流动大部分情形下为层流。
利用层流的几何规律性,可以实现细胞在通道中的有序排布。
如图 1(a)所示,在层流模式下,可利用多通道主动掌握的鞘流实现通道内的细胞样本聚焦。
鞘流聚焦具有极好的可控性,不仅能实现细胞样本聚焦宽度的调节,同样也能实现细胞聚焦位置的掌握。
此外,鞘流聚焦可以适用于险些所有细胞样本,因而也是目前运用最为成熟广泛的细胞聚焦方法。
基于鞘流聚焦可实现基于光学和电学检测的细胞计数。
此外,高效的细胞分离每每须要对细胞样本进行预先聚焦,当细胞样本被鞘流聚焦到微流利道一侧时,不同尺寸的细胞可基于捏流分离(pinched flow fractionation,PFF)事理实现分离。
鞘流聚焦同样可以用来进行高效的单细胞捕获。
U形微筛是常见的单细胞捕获构造,合理的微筛尺寸设计可以担保单细胞捕获的确定性。
Raymond等利用鞘流聚焦并结合U形微筛位置的合理布局,实现了肿瘤细胞的顺序、高效单细胞捕获。

确定性侧向位移(DLD)技能指利用精确设计的微柱阵列实现细胞操纵。
如图1(b)所示,该方法基于细胞与微柱阵列间的相互浸染。
微柱阵列中的大细胞与微柱阵列碰撞后发生侧向位移,向一侧汇聚,而小细胞在与微柱阵列碰撞后并不发生侧移;按照其原流向流过阵列,不同大小细胞的侧向偏移角度会不一样,因而可基于 DLD实现不同尺寸细胞的分离。
该方法具有实验过程大略、构造紧凑、重现性好等优点,但是仅依赖尺寸无法实现大小形状相似细胞的精确分选,限定了其在诸如细胞亚型剖析等领域的运用。
目前,大部分 DLD芯片基于圆形微柱阵列,已经可以实现快速、高回收率的富集分选 CTCs,然而大多只能事情在较低流速下,因此,其样本处理通量仍不能知足临床运用的哀求。
Sturm等采取三角形微柱阵列提高了DLD芯片的细胞样本处理通量,实现了在最高达 10 mL/min流量下从血液细胞等分离CTCs。

如图 1(c)所示,惯性微流控技能基于惯性升力对细胞进行操纵,利用流动聚焦事理可实现大小、形状及变形能力不同的细胞的聚焦与分离。
其芯片构造大略,单位韶光内的细胞样本处理量大,且对细胞损伤较小,有利于保持较高的细胞存活率。
然而,细胞间相互浸染会大大降落该技能的细胞操纵效率,因此,仅适用于事情在一定的细胞浓度内,以是,基于该技能的血液细胞分选常日须要预先稀释血液样本。

基于各向异性微构造勾引产生的二次流同样被广泛运用于微流芯片内的细胞操纵。
如图 1(d)所示,该方法常日在微流道内集成鱼骨头、倾斜阵列等有规律的微构造在垂直于紧张流体方向的截面内产生二次涡流,细胞在涡流的驱动下会与通道构造产生相互浸染,从而逐渐偏离起始流线。
该技能可用于实现细胞在微流利道内的无鞘流聚焦,同时也可利用该技能分离不同尺寸大小和密度的细胞。

(a)基于鞘流聚焦的细胞操纵;(b)基于确定性侧向位移(DLD)微柱阵列的细胞操作;(c)基于惯性微流体的细胞操纵;(d)基于各向异性微构造勾引二次流的细胞操纵

图 1 常见的基于流体动力学事理的细胞操纵方法

机器式的细胞操纵

机器式细胞操纵指通过外部施加机器力的方法直接或者间接地实现细胞操纵。
目前,最常用的机器式方法为基于多层柔性薄膜的有源气动微阀掌握。
Quake 研究组 率先提出了多层 PDMS 软蚀刻技能(multilayer soft lithography),在单个微流控芯片上整合了可以快速、准确掌握流体流动的有源气动微阀。
该气动微阀的发明使在芯片上实现高密度的流体掌握和大规模的功能集成成为可能,因而在微流控技能的发展进程中具有里程碑意义,该气动微阀也常被称为Quake valve。
其构造示意图如图2(a)所示,其包含流动层与掌握层,两层之间为可变形薄膜。
当通过掌握层施加压力时,薄膜变形与流动层通道贴合,阻断流动层的液体流利,反之,当掌握层不施加压力或者施加较小压力时,流动层则呈现打开或半打开状态。
如图 2(a)所示,如果在一条流道前次序排列了 3个阀,通过对3个阀开关状态的调控可实现蠕动泵的功能。
因此,基于主动阀可实现微量细胞样本在芯片内的精确、灵巧操纵,同时还具有体积小、相应快、寿命长、工艺大略、本钱低等上风,被广泛用于群体和单个细胞的操纵。

图 2(b)所示为基于主动阀掌握的自动化微流控细胞共培养系统,该系统同时具备活细胞成像功能。
基于该共培养系统,研究职员从韶光和空间角度研究了化学刺激调控下的单个免疫细胞的二次应激旗子暗记的产生及其在其他组织细胞中间的传播过程。
有别于传统上研究细胞群体与群体、单细胞和单细胞之间的交互浸染,该微流体装置可通过气动阀的精确掌握实现单个免疫细胞与多个组织细胞的可控共培养。
如图 2(c)所示,基于有源气动微阀可实现微流控芯片上高通量的单细胞分离、裂解、反转录和基因组扩增等一些列操作。
基于该技能,美国 Fluidigm公司开拓了一款名为C1™ Single-Cell Auto Prep System的单细胞自动化预处理系统,该系统可以一次性自动分离处理 96个悬浮状态的单细胞,目前该系统已经在环球很多高校和研究机构被用来进行单细胞基因组学研究。
除了通过掌握流体流动实现细胞操纵,气动微阀还被用于产生机器力对细胞进行机器刺激,且可实现对细胞施力、频率及浸染韶光的掌握。
在正常生理条件下,诸多细胞如骨细胞、心肌细胞及血管内皮细胞每每处在繁芜的力学环境当中,细胞在成长过程中会受到外界机器力的刺激。
因此,构建一个具备动态机器力刺激的细胞培养环境,对付研究机器刺激对细胞增殖和分解等方面的调控浸染显得极其主要。
如图 2(d)所示为微流控芯片上范例的机器刺激细胞培养构造,通过调控下层气动阀的进气压力,动态机器刺激便通过可变形的弹性薄膜施加于细胞、生物质料和组织上。
通过在单一芯片上集身分歧直径的压力腔室,可在同一芯片上的不同空间位置同时施加多路机器刺激旗子暗记。
同时,该设计还可在可变形薄膜内集成应力传感,方便实现施加于细胞之上机器应力的实时在线读取。
只管气动微阀在细胞操纵上具有精度高、相应快等传统手段无法比拟的优点,但其外部掌握设备过于繁芜, 如何简化芯片的外部操作,使之适应研究职员的事情习气,是基于气动微阀掌握的大规模集成微流控芯片须要不断改进的技能问题。

(a)微流芯片中常用Quake valve的构造示意;(b)阀控细胞配对与相互浸染研究;(c)阀控单细胞分离用于单细胞PCR;(d)主动阀掌握下的细胞机器刺激

图2 基于主动阀掌握的细胞操纵

电控细胞操纵

常见的电控细胞操纵方法有两种:基于介电泳效应(DEP)和基于勾引电荷电渗效应(ICEO)。
DEP力为粒子在非均匀电场中受到极化后与电场相互浸染而产生的力。
该浸染力会引起粒子在非均匀电场中漂移运动,因而可利用 DEP 力实现生物细胞操纵。
介电泳力的表达式为

式中,FDEP为细胞所受的 DEP协力;εm为细胞所处悬浮液的介电常数;r为细胞半径;E为电场标量强度值;K(ω)为克劳修斯-莫索提因子,也常称 CM 因子;ε∗cell为细胞的复合介电常数;ε∗m为悬浮液的复合介电常数;σ 为电导率;ω 为互换电场角频率。

可见,细胞所受 DEP力的大小取决于细胞尺寸、细胞和周围溶液的介电性子、电场的梯度及电场频率。
如图 3(a)所示,DEP 可分为正向和负向两种 ,当Re[K(ω)] > 0 时,细胞受到正向力的浸染而往强电场区域运动,当Re[K(ω)] < 0 时,细胞受到负向力的浸染而向弱电场区域运动。
Re[K(ω)] = 0 所对应的电场频率被称为临界频率,此时细胞所受介电泳力为 0。
因此,有明显临界频率特色的两种细胞可通过介电泳效应在微流控芯片内实现分离。
DEP芯片的细胞操纵效率很大程度上取决于芯片电极的构造,当前大多数 DEP 芯片内的电极都是基于薄膜工艺的平面构造。
如图 3(b)所示为一种基于平面叉指倾斜电极的细胞分离芯片,该芯片利用重力沉降效应进行细胞预聚焦,当聚焦细胞流过倾斜电极表面时,细胞由于不同大小 DEP力的浸染而实现分离。
该设计被成功用来完成了两种尺寸相同的白血病细胞(THP-1细胞与 OCI-AML3)的高效分离。
除了在细胞分离方面的运用,DEP 芯片还被广泛用于病原体富集、细胞图案化、单细胞捕获等方面。
DEP 在细胞操纵方面具有易与微流体系统结合、免标记、对罕有细胞的高选择性等优点。
DEP 细胞操纵系统需在低电导率的溶液中操纵细胞,而常见的生理溶液,如血液、尿液等大多是高导电度,须要对细胞样本做严格的预处理,限定了操纵样本,因此目前还没有基于 DEP的细胞操纵技能在临床领域成熟运用。

ICEO是发生在物体表面的一种电化学效应,表示为一种电动条件下的非线性流体流动征象。
如图 3(c)所示,在外加电场浸染下,电场引起的勾引电荷扩散引发滑移形式的局部流体流动,而这些勾引扩散电荷分布在固/液界面上的边界薄层中,即双电层中。
正由于双电层的存在,才使得可将电场力浸染在流体分子上,进而操控微流体运动。
图3(d)所示为一种基于3D勉励电极构造的 ICEO芯片,通道底部中间铺设的不接电的长条形金属板为悬浮电极,当在勉励电极两侧电极施加交变电场时则可得到悬浮电极表面的 ICEO 涡流。
涡流在悬浮电极中心速率非常小,因而细胞可在涡流浸染下被聚焦到悬浮电极中心。
基于 ICEO,可实现细胞在特定区域内的高效富集,也可实现指定区域内高通量、非打仗的单细胞捕获。
同时,ICEO还可当作微泵实现微流道内的可控流体运送。
ICEO微流控芯片可实现电极阵列与微通道小尺度集成,构造紧凑,易于加工,且悬浮电极无需外部电旗子暗记接入,因而可根据不同运用处景进行设计布局。
然而,由于ICEO微流控芯片依赖勾引二次流,在连续进样的情形下,其细胞操纵效率与精度将随着流速增大而大打折扣,因而该方法同样在连续样本操纵上存在通量低的弊端。

(a)基于介电泳的细胞操纵事理示意图;(b)用于细胞连续分离的介电泳芯片示意图;(c)基于勾引电荷电渗的细胞操纵事理示意图;(d)基于勾引电荷电渗的连续细胞聚焦

图3 电控细胞操纵

磁控细胞操纵

磁控细胞操纵是指利用永磁铁或电磁铁对细胞进行操纵。
由于细胞本身常日既不表现顺磁性,也不表现逆磁性,每每须要对细胞用免疫纳米磁珠进行表面润色。
表面改性的纳米磁珠通过抗体与抗原的特异性浸染黏附在细胞表面,因而磁控法为一种基于标记的操纵方法。
如图4(a)所示,在外部磁场浸染下,结合了磁珠的细胞在磁力驱动下会偏移原来的流线,因此,有磁珠结合与无磁珠结合的细胞可通过外部磁场操控实现高效分离与捕获。
磁控法目前已经被普遍用于在微流控芯片上分离纯化 CTCs,通过正向富集的方法,表面有磁珠特异性吸附的 CTCs可以被准确地从血细胞等分离出来 。
正向富集法须要提前知道CTCs有别于其他血液细胞的特异性表面标志物,因而只能针对目前已知的肿瘤细胞进行分离。
反之,负向耗散法可实现血液中肿瘤细胞的体外分离,该方法利用磁珠与白细胞特异性结合,通过磁控操纵逐级耗散白细胞达到分离纯化 CTCs 的目的。
该方法无需对CTCs进行磁珠吸附,适用于目前险些所有类型肿瘤细胞的分离。

(a)磁控细胞操纵及其运用;(b)光控细胞操纵,左图为光镊自动化操纵下的细胞连续分离,右图为光勾引介电泳操纵细胞;(c)声控细胞操作,左图为基于 SSAW的微流控细胞连续分离,右图为基于 SSAW的两种细胞图案化共培养

图 4 磁、光、声控细胞操纵

基于免疫磁珠的方法进行细胞样本的操纵大略可靠,目前已经成熟运用于许多大型剖析检测平台。
然而,此方法很难做到同时分离纯化多种细胞,且后续细胞与表面磁珠的分离也很困难。
此外,磁珠吸附可能会对细胞膜蛋白和构造产生危害,不利于后续进一步的细胞培养剖析,使其运用处景受限。

光控细胞操纵

光控细胞操纵手段目前有两种,即基于光镊和光勾引介电泳(ODEP)的细胞操纵方法。
光镊对粒子的操纵能力首先被美国科学家 Arthur Ashkin 创造,他创造强聚焦的激光束可以把介质当中折射率较高的物体拽向激光束的中间部位,并进一步在 1987岁首年月次揭橥了单光束梯度激光的光镊效应。
基于单色激光的光镊对尺度介于纳米与几十微米之间的粒子都具有可操纵性,也可利用光镊实现对活体生物细胞的操纵。
且基于机器人赞助掌握的光镊可实现细胞的多维度自动化操纵,已被用于细胞力学、细胞输运、细胞迁移等方面的研究。
光镊不仅能实现非连续流下的细胞操纵,也可结合微流控芯片实现连续流下的细胞操纵,个中最范例的运用当属光镊增强的微流控细胞分选。
如图4(b)中左图所示,首先通过鞘流实现细胞样本在通道上游的聚焦,通过细胞的荧光特色进行图像识别,光镊自动捕获并拖动目标细胞使其发生跨流线的侧向位移,从而使目标细胞被网络到特定出口。
该方法具备准确度高、非侵入等优点。
但光镊对细胞产生的操纵力每每处于皮牛量级,因而连续流下的细胞操纵哀求细胞进样流速不能太高,且光镊对细胞很难做到一次性大批量,这两点限定了光镊在高通量细胞操纵方面的运用。
此外,光镊系统外围弘大的光路系统难以小型化,因而其本钱也较高。

ODEP 是一种基于 DEP 根本上开拓出来的一种新型微粒操纵技能,其粒子受力机制与传统 DEP一样,即利用非均匀电场极化粒子并对其产生 DEP力。
两者的不同点在于非均匀电场产生办法,比较传统介电泳操纵,ODEP无需预先加工电极图案。
如图4(b)中右图所示,可利用 DMD投影仪经显微镜头投射光斑图案到芯片基底上天生灵巧可控的虚拟电极。
其事情事理类似光伏发电,非晶硅基底材料在光的引发下产生光生载流子,导致光照区载流子浓度升高从而使光照区电导率迅速增加,进而导致光照区和暗区分压不同,在粒子操纵空间内产生非均匀电场,从而实现细胞等生物粒子的 DEP操纵。

ODEP 同样具备普通 DEP 非打仗、损伤小的优点,因而也被广泛用于多样化的细胞操纵,如 CTCs分离、水凝胶内的细胞图案化及在连续流下分离提取细胞核等。
和普通光镊比较,ODEP具有设备大略,可实现小型化,且对操纵粒子的光学性子没有哀求,因而具有极大的灵巧性。
但是 ODEP同样存在和普通介电泳一样的固有缺陷,即需在低电导率的溶液中操纵细胞,因而也限定了其他临床上的运用。
且 ODEP芯片的基底由于沉积非晶硅而不透明,影响了利用颠倒生物显微镜进行活细胞成像。

声控细胞操纵

声控细胞操纵方法基于声波进入微流体后所产生的繁芜的流—固耦合效应来实现细胞操纵。
声波形式上分为体波与表面波,声表面波(SAW)是一种只能在固体表面传播的弹性声波,其能量大部分集中在基底表面以下深度约几个波长范围内。
由于 SAW芯片具有频率较高、能量集中、穿透性好、便于集成等优点,近些年已被大量研究用来进行微流控芯片上的细胞操纵。
叉指换能器(IDTs)常被用来产生声表面波,通过调节叉指电极的叉指间距可实现对SAW共振频率的调控。
SAW 共振频率可达 GHz,故可用来实现微米乃至亚微米颗粒的精确操控。
此外,改变 IDTs的形状还可实现对声场分布的调控,使该操纵方法具备极大的灵巧性。
SAW器件采取标准维纳加工工艺加工,具备极好的重复性和同等性,且平面加工方法使其可实现与微流控芯片的集成。
当声波传播进入流体媒介中,流体通过接管声波而得到动量,从而发生整体移动,这种征象被称为声流效应。
当流体中的粒子尺寸远小于波长且质量很小,那么它就会随着流体运动,这样即实现了对流体中粒子运动的操控。
基于声流可以在微流控芯片上实现细胞样本的富集、筛选等操作,例如 Cooper课题组利用声流实现了血液液滴内疟疾传染与未传染红细胞的富集和分离。
由于被疟疾传染的红细胞密度小于正常红细胞,因而在声流操纵下,未传染红细胞被富集在液滴中间,而被传染细胞则被富集与液滴边缘。
全体过程可在 5 s内完成,由此快速实现了病原体的非标记富集与分离。
如图 4(c)左图所示,当两列频率相同声表面波相向传播产生叠加时,就会产生声表面波驻波(SSAW)。
在 SSAW的影响下,粒子将会受到驻波声辐射力,进而聚拢在波腹或波节位置,粒子会汇聚于波腹还是波节取决于粒子和周围媒介的性子,如密度和可压缩系数。
声辐射力紧张是由于粒子对声波产生反射、折射、接管等效应,进而导致动量在声波与颗粒之间发生交流。
声辐射力的大小与SSAW的波长、振幅及粒子的尺度和密度等物理性子干系。
近些年,大量研究事情在微流控芯片上产生 SSAW实现了细胞的精准高通量操纵,如细胞分选、单细胞捕获、细胞图案化共培养。
图 4(c)左图所示,不同尺寸的细胞由于所受声辐射力不同,因此在连续流动的流体中,尺寸大的细胞产生了往波节方向的较大侧向偏移,而小细胞偏移不明显,因而利用SSAW实现了基于尺寸差异的细胞连续分离。
图 4(c)右图为 Huang 课题组基于 SSAW通过顺序图案化排列的方法实现了两种细胞的图案化共培养,两种细胞在通道内不同位置排列的实现基于利用频率相同而相位相反的两种勉励旗子暗记。

声控技能在细胞操纵上具有非打仗、无损伤、穿透性较好等优点。
然而,声控技能在微流控细胞操纵领域的运用还处于起步阶段,仍有大量问题有待办理,譬如须要进一步研究声波、流体和细胞之间的非线性相互浸染。
当前的声控芯片大多基于 LiNbO3基片,材料单一,亟待研究基于新型压电材料的声波器件基片。

结 论

利用微流控技能进行生物细胞的多样化高效操纵一贯是交叉学科领域的研究热点。
综述了用于微流控细胞操纵的常见方法及其运用,并对各种方法的优缺陷进行了谈论总结。
可以看出,每种方法都存在着其固有上风与毛病。
总体上,基于流体动力学的被动式方法可实现细胞样本的高通量操纵,但是其在细胞操纵精准度与灵巧性上存在不敷;而电控、光控等主动式方法具有准确度高、可灵巧掌握的优点,但由于电、光、声、磁场在操纵微米尺度细胞上存在操作力较小等缺陷,因而无法做到连续流体下的高通量细胞操纵。
因此,实际运用中,每每须要结合多种方法,在担保高通量的同时实现高效、准确的细胞操纵,并尽可能减轻对细胞造成的附加损伤。
目前能够胜任各种细胞操纵任务的完美方法险些不存在,因而在研究过程中应将多种方法加以结合,实现1+1>2的效果是微流控细胞操纵领域今后须要研究的方向,同时,要不断改进现有技能,并开拓用于细胞操纵的新方法与新技能。
此外,从实验与理论仿照上研究揭示流体光学、流体细胞力学以及微流体力学等微流控中涉及的根本理论规律也将成为助力微流控细胞操纵技能发展的主要手段。
末了,基于当前险些所有微流控细胞操纵方法都是进行体外的细胞操纵,因此未来将微流控芯片植入皮下、血管等组织器官中,实现直接在人体内进行精密的细胞操纵预剖析,实现疾病的无创、微创诊断与治疗也是值得期望的方向。
(任务编辑 刘志远)

基金项目:国家自然科学基金委员会与喷鼻香港研究局联合科研帮助基金项目(N_CityU102/15)

参考文献(略)

作者简介:孙东,喷鼻香港城市大学生物医学工程系,教授,研究方向为基于细胞的生物医学工程、机器人与自动掌握技能。

注:本文揭橥于《科技导报》2018 年第16 期。
敬请关注。

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